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NC3Rs:国家动物替代改良和减少研究中心
指导

血液采样:兔子

兔血液取样方法,包括非手术和终端技术。

一般原则

你应该阅读抽血一般原则页在进行任何血液采集程序之前。

耳缘静脉/动脉(非手术)

技术

从耳朵边缘静脉或动脉中取出血液是最常见和最不具侵略性的方法之一。该技术可用于所有菌株和单个和重复样品。动脉的使用通常用于大容量的样本或动脉血液,但有较大的血肿和挫伤的风险。

耳中央动脉取样的幻灯片和视频可在Norecopa的网站。

兔子应该是克制用一块大布将动物包裹起来,可以避免不经意的移动。克制会造成压力,因此克制的时间应尽量缩短。局部麻醉药膏(如EMLA药膏)可在采血前30分钟涂抹于患处。血液从耳尖流出,远离耳底。连续的血液样本可以通过移动到耳朵底部的同一静脉和交替耳朵。为了扩张血管,耳朵应该被加热。这可以通过轻轻抚摸来实现;应该没有必要使用热灯。耳朵的背表面应该被修剪。请注意,不再推荐用手术刀刮除毛发,因为它会去除皮肤的表皮层。无菌技术应该使用。麻醉不是必要的,但可以用于难以收留的动物的福利理由。在针插入之前,静脉通常在远端(远离动物)被阻塞。

根据兔的大小和采样频率,可采集0.5 - 10ml血液。24小时内最多可收集8个样本,取决于样品体积和科学的理由。为了尽量减少对耳朵的损伤,应尽量减少抽取血液样本的次数(每次不超过三针)。

在将动物送回笼子或围栏之前,用手指按压置于采血部位的软组织约两分钟,以停止血流。

总结

考虑 建议
数量的样品 根据采样量的不同,在24小时内最多可采集8个样本。
样品体积 0.5 - 10毫升,视兔的大小和品系而定。
设备 19G - 23G蝴蝶针,根据家兔品系和大小而定。
员工资源 两个人:一个去约束兔子,另一个去取血样。
的不利影响
  • 擦伤/出血< 1%
  • 感染< 1%

资源和引用

  1. Pekow CA(2012)。兔的基本实验方法。:实验室兔子,豚鼠,仓鼠和其他啮齿类动物(Eds。sumow MA, Stevens KA和Wilson RP), 1版。学术出版社。
  2. Talcott先生et al。(2015)。技术的实验。:实验动物医学(Eds。Anderson LC, Otto G, Pritchett-Corning KR, Whary MT), 3理查德·道金斯版。学术出版社。
  3. Suckow马:et al。(2010)。实验方法。:实验室的兔子(Ed. Suckow MA) 2nd版。CRC出版社。
  4. Parasuraman年代et al。(2010)。小型实验动物的血液样本采集。药理学与药物治疗学杂志1(2): 87 - 93。0976 - 500 - x.72350 doi: 10.4103 /

心脏穿刺(终端)

技术

如果腹膜需要灌洗以收集细胞,不应使用心脏穿刺,因为这种技术会导致血液逃逸到腹膜腔。

心脏穿刺如果不需要凝血参数、单独的动脉或静脉样本或心脏组织学,那么从安乐死的兔子或深度麻醉的兔子中获得单一、大、高质量的样本是一种合适的技术吗?它适用于所有品种的兔子。

该技术的幻灯片和视频可从挪威实验动物科学和替代品参考中心

根据兔子的大小和心脏是否跳动,可获得60 - 200毫升的血液样本。血液样本来自心脏,最好是心室,可以通过左侧胸部,通过横膈膜,从胸骨顶部或通过开胸手术获得。血液应该缓慢排出,以防止心脏衰竭。

总结

考虑 建议
数量的样品 一个
样品体积 60 - 200毫升,取决于兔子的大小。
设备 19 - 21G针
员工资源 需要一个人取血样。

资源和引用

  1. Suckow马:et al。(2010)。实验方法。:实验室的兔子(Ed. Suckow MA) 2nd版。CRC出版社。
  2. Pekow CA(2012)。兔的基本实验方法。:实验室兔子,豚鼠,仓鼠和其他啮齿类动物(Eds。sumow MA, Stevens KA和Wilson RP), 1版。学术出版社。
  3. Parasuraman年代et al。(2010)。小型实验动物的血液样本采集。药理学与药物治疗学杂志1(2): 87 - 93。0976 - 500 - x.72350 doi: 10.4103 /

在尝试任何采血程序之前,您应该阅读采血的一般原则页。

浅蓝色背景上有五根针和空注射器
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